【产品名称】
商品名称：鹅细小病毒（GPV）核酸检测试剂盒(荧光 PCR 法)
Name ：Diagnostic Kit for goose parvovirus DNA（Real-Time PCR Method）
【包装规格】25T/盒、50T/盒
【预期用途】
鹅细小病毒病是由鹅细小病毒（Goose Parvovirus，GPV）引起的雏鹅急性或亚急性、败血性传染病也叫小鹅瘟（Goose Plague，GP）。GPV 自然感染 1 月龄以内雏鹅，雏番鸭也很易感染。鹅和番鸭是 可自然感染本病的禽类。10~13 日龄以内雏鹅的发/病/率和死亡率常高达 95%~ ，15 日龄以上雏鹅的发/病/率和死亡率有所下降，40 日龄以上只有个别发/病死亡。成年鹅感染后不显症/状而成为带毒者，可能将疾病垂直传播至下一代。所有日龄鹅对 GPV 都有免疫学反应，但成年鹅不表现临床症/状。近年来流行的鹅细小病毒病，患病鹅发/病日龄有增大倾向。
本试剂盒适用于检测水禽类心/脏、肝脏、脾/脏等组织样本及粪便样本中的鹅细小病毒，用于鹅细小病毒感染的辅助诊断，其检测结果仅供参考。
【检验原理】
本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术，设计一对鹅细小病毒病毒特异性引物，结合一条特异性探针，用荧光 PCR 技术对鹅细小病毒的核酸进行体外扩增检测，用于临/床/上对可疑感染病料的病原学诊断。
【试剂组成】
包装规格 25T/盒 50T/盒
GPV 反应液 500μL×1 管 500μL×2 管
酶液 25μL×1 管 50μL×1 管
GPV 阳性质控品 50μL ×1 管 50μL ×1 管
阴性质控品 250μL ×1 管 250μL ×1 管
说明：不同批号的试剂盒组分不可交互使用。
【储存条件及有效期】
-20℃±5℃，避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次，有效期 12 个月。
【适用仪器】
ABI7500、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。
【标本采集】
对于死亡水禽，可直接采集心/脏、肝脏、脾/脏等组织，于 0℃ ~4℃冷藏保存并立即送检，采样过程中样品不得交叉污染[1]。
对于活水禽，可直接采集粪便。
【保存和运输】
采集或处理好的样品在 2℃~8℃条件下保存应不超过 24 h；若需长期保存，应放置-70℃以下保存，冻融不超过 3 次。
【使用方法】
1. 样品处理（样本处理区）
1.1 样本前处理
死亡水禽，剖检取心/脏、肝脏、脾/脏等组织，可单独使用，也可混合使用。各组/织/剪碎后研磨成糊状，按
1:5 加入生理盐水，将混悬液收集于离心管内，-20℃反复冻融三次，以 6000g 离心 5min，取上清液待检[1]
活禽，取粪便于 1×PBS 中，混匀后瞬时离心，取上清。
1.2 核酸提取
推荐采用优利科（上海）生命科学有限公司生产的核酸提取或纯化试剂（磁珠法或离心柱法）进行核酸提取， 请按照试剂说明书进行操作。
2. 试剂配制（试剂准备区）
根据待检测样本总数，设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照；样品每满
10 份，多配制 1 份)，每测试反应体系配制如下表：
试剂 GPV 反应液 酶液
用量（样本数为 N） 19μL 1μL
将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中，20μL/管。
3. 加样（样本处理区）
将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL，分别加入相应的反应管中，盖好管盖，混匀， 短暂离心。
4. PCR 扩增（核酸扩增区）
4.1 将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内；
4.2 设置好通道、样品信息，反应体系设置为 25μL；
荧光通道选择： 检测通道（Reporter Dye）FAM， 淬灭通道（Quencher Dye）NONE，请勿选择 ROX 参比荧光。
4.3 推荐循环参数设置：
步骤 循环数 温度 时间 收集荧光信号
1 1 cycle 95℃ 2min 否
2 45 cycles 95℃ 15sec 否
60℃ 30sec 是
5. 结果分析判定
5.1 结果分析条件设定（请参照各仪器使用说明书进行设置，以分析 ABI7500 仪器为例）
反应结束后自动保存结果，根据分析后图像调节 Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值（用户可根据实际情况自行调整，Start 值可设在 3～15、End 值可设在 5～20，使阈值线位于扩增曲线指数期，阴性质控品的扩增曲线平直或低于阈值线），点击 Analyze 自动获得分析结果。
5.2 结果判断
阳性：检测通道 Ct 值≤40，且曲线有明显的指数增长曲线； 阴性：样本检测结果 Ct 值>40 或无 Ct 值。
5.3 质控标准
阴性质控品：无特异性扩增曲线或无 Ct 值显示；
阳性质控品：扩增曲线有明显指数增长期，且 Ct 值≤32； 以上条件应同时满足，否则实验视为无效。
6. 检测方法的局限性
1. 样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关；
2. 样本提取过程中没有控制好交叉污染，会出现假阳性结果；
3. 阳性对照、扩增产物泄漏，会导致假阳性结果；
4. 病原体在流行过程中基因突变、重组，会导致假阴性结果；
5. 不同的提取方法存在提取效率差异，会导致假阴性结果；
6. 试剂运输，保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降，出现假阴性或定量检测不准确的结果；
7. 本检测结果仅供参考，如须确诊请结合临床症/状以及其他检测手段。
【注意事项】
1. 所有操作严格按照说明书进行；
2. 试剂盒内各种组分使用前应自然融化，完全混匀并短暂离心；
3. 反应液应避光保存；
4. 反应中尽量避免气泡存在，管盖需盖紧；
5. 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服；
6. 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行，以免交叉污染；
7. 实验完毕后用 10%次氯/酸或 75%酒/精或紫外灯处理工作台和移液器；
8. 试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
【参考文献】
[1] 江苏省质量技术监督局，DB32/T 1460-2009,鹅细小病毒的检测 PCR 方法[S]
[2] 辽宁科学技术出版社，《禽病学》第 14 版（译），ISBN 978-7-5591-2094-6，中国版本图书馆 CIP 数据核字
（2023）第 110085 号